Muestras sanguíneas y de orina

Hematología. Análisis sangre. Punción. Cuidados paciente. Expectoración. Citología. Hemocultivos

  • Enviado por: Randy
  • Idioma: castellano
  • País: Colombia Colombia
  • 33 páginas
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1. RECOLECCION DE MUESTRAS DE SANGRE

Para una gran cantidad de estudios que requieren muestras sanguíneas, se deben conservar condiciones de ayuno. En algunos casos, el ayuno debe prolongarse como mínimo seis (6) horas y en ocasiones durante doce (12) horas. Finalmente, muchos estudios de laboratorio clínico no requieren de estas condiciones y pueden practicarse en cualquier momento. Otros estudios, necesitan adaptarse a ciertos tiempos de recolección de especímenes.

En cualquiera de los casos, deben seguirse las siguientes indicaciones generales, a saber:

  • La sangre debe recolectarse en tubos de vidrio o plástico estériles (preferiblemente tubos al vacío). En caso de recolectar la sangre con jeringa y agujas estériles, deben llenarse los tubos con precisión y agilidad, evitando en todo momento realizar procedimientos bruscos que puedan producir rompimiento de las células sanguíneas (hemólisis). En otro tipo de estudios, la sangre no se deposita en tubos, sino en otro tipo de recipientes (p.ej., frascos de hemocultivo ).

  • Al recolectar la sangre, debe permitirse que se coagule, si es el caso, o someter los tubos con la muestra a ciertas maniobras recomendadas para evitar su coagulación.

  • En otras ocasiones, tan solo se colocan unas pequeñas gotas de sangre en láminas portaobjetos de vidrio, (extendidos de sangre periférica), en capilares de vidrio o en placas de vidrio o plástico de origen comercial para la realización de algunos estudios.

  •  Anticoagulantes

    Existen múltiples factores involucrados en el proceso de coagulación de la sangre. Los anticoagulantes son sustancias que previenen la formación de coágulos. Existen diferentes tipos de ellos en polvo o líquidos. Deben seleccionarse siempre el anticoagulante apropiado según el estudio que se quiera realizar.

    Los anticoagulantes más comunes son:

    EDTA: (ETILEN-DIAMINO-TETRA-ACETATO) Este tipo de anticoagulante es utilizado principalmente cuando se realizan estudios en donde se cuentan células.

    CITRATO DE SODIO: Generalmente en concentraciones al 3.8 % y ser utiliza comúnmente en estudios de coagulación.

    HEPARINA: Se utiliza tanto en algunos estudios de rutina como especializados. Su presentación puede incluir heparina con concentraciones de sodio o litio. En general, la heparina con tilio es utilizada para estudios de química y la heparina sódica se utiliza para estudios de linfocitos (p.ej., HLA).

    OXALATOS: Son anticoagulantes menos comunes, utilizados ocasionalmente en las determinaciones de glucosa.

    Comentario: Existen varias compañías comerciales productoras de las diferentes presentaciones de tubos colectores de recipientes. Es recomendable acudir a ellas, puesto que le evitan al laboratorio clínico la preparación de anticoagulantes, los cuales deben prepararse en concentraciones y cantidades exactas. Se recomienda en caso de utilizar este tipo de tubos con anticoagulantes, que su llenado sea adecuado, para permitir que la relación entre sangre y anticoagulante sea la ideal ( No deben sobrellenarse los tubos ni colocar muy poca cantidad de sangre en ellos. ).

    Los tubos deben mezclarse inmediatamente, una vez que la sangre ha entrado en ellos. Invertir suavemente ( 10 - 15 veces ) o colocarlos en rotores especiales, para así obtener mezclas homogéneas.

    Existen códigos de colores internacionalmente conocidos, para las diferentes presentaciones de tubos colectores de nuestras sanguíneas.

    • Tapa roja…………………….. Sin anticoagulante (Tubo seco ).

    • Tapa violeta…………………. Con EDTA.

    • Tapa azul …………………… Con CITRATO DE SODIO

    • Tapa verde (o blanca)……….. Con HEPARINA.

    • Tapa gris……………………. Con OXALATOS.

    También se pueden conseguir tubos cuya característica presenta un gel o filtro separador de suero, formando una barrera entre el suero separado y las células sanguíneas. Se encuentran en el comercio como “tubos separadores de suero” (SST).

    Normas básicas de esterilidad

    Tener siempre en cuenta que existen bacterias por todas partes. La piel está cubierta de ellas:

  • Utilizar siempre guantes y bata mientras la obtención de muestras. Los guantes deben desecharse y ser cambiados por un nuevo par después de obtener a cada paciente ( Cuando se lavan guantes, las soluciones utilizadas para este propósito causan diminutas aberturas indetectables que permiten la penetración de agentes infecciosos a través de ellas ).

  • Lavarse las manos antes y después de haber atendido cada paciente.

  • Todas las agujas, jeringas o tubos colectores deben ser estériles.

  • Al utilizar una aguja, esta no debe haber tocado ningún elemento antes de la punción de la piel. Si esto llegara a ocurrir accidentalmente, deberá utilizarse una aguja nueva.

  • Si no se lograra obtener sangre en la punción inicial, deberá repetirse el procedimiento utilizando una aguja nueva en el segundo intento ( La primera esta contaminada y en su interior además, pueden quedar partículas que la obstruyen ).

  • Desinfectar previamente el área de punción. Generalmente el desinfectante de elección es el alcohol. Pueden utilizarse eficientemente, otras soluciones antisépticas como el yodo.

  • Nunca tocar el sitio de venopunción después de haber sido desinfectado.

  • Ordenes médicas

    Desafortunadamente, en ocasiones, las órdenes médicas de solicitud de exámenes no son claras. Por este motivo, se recomienda seguir los siguientes pasos:

  • Revise cuidadosamente la orden de exámenes, asegurándose de haber entendido claramente la solicitud.

  • Si la orden médica no es clara, consulte el caso con su supervisor inmediato.

  • Si la orden comprende algún tipo de incongruencia, incompatibilidad o incluso un riesgo de procedimiento, consulte el caso con su superior inmediato o directamente con el médico que solicita el examen.

  • Tiempos en las tomas de muestras

    Existen dos tiempos en los exámenes. El primer tipo ( tiempo simple ), cuando se trata de un examen que solo requiere una punción. El segundo tipo ( tiempo múltiple ), cuando el examen amerita y comprende diferentes muestras en diferentes tiempos. En cualquiera de los casos, debe tenerse en cuenta:

  • Las condiciones de preparación del paciente deben ser correctamente adoptadas.

  • Algunos pacientes toman medicamentos durante el día, que pueden interferir con los resultados.

  • Si se le ordena al paciente de regresar al laboratorio para tomar segundas muestras, deben suministrarse las recomendaciones que debe seguir el paciente, mientras llega el momento para los estudios posteriores.

  • La única persona responsable de la toma de muestras en diferentes tiempos, es aquella que dio inicialmente las indicaciones y debe asegurarse que el paciente cumpla los horarios indicados. En caso contrario, deberá repetirse en otra ocasión la totalidad del estudio.

  • Relación con el paciente.

  • Identifique al paciente. Salúdelo amablemente e identifíquese ante él.

  • Asegúrese de que los procedimientos que se realizarán corresponden al paciente identificado. Si el paciente se encuentra hospitalizado, no se guíe solamente por el número de cama, de habitación o de historia clínica. Confirme personalmente con él sus nombres y apellidos.

  • Inspire confianza y seguridad hacia el paciente y explíquele el procedimiento que le será practicado.

  • Trate de eliminar cualquier temor que el paciente pueda presentar.

  • Procure no extenderse demasiado en conversaciones coloquiales, opinar sobre algún tema político, religioso, etc. Sus comentarios podrán molestar seriamente a un paciente. Mantenga una actitud educada, profesional y amable. Hable en voz baja; otros pacientes presentes no deben enterarse de los exámenes o de las enfermedades que pueda tener el paciente que está siendo atendido.

  • Al referirse a los estudios, haga cierto énfasis en la frase: “Su médico nos solicita que…”, “Los exámenes que le ordena su médico…”, etc. Esto le confiere mayor importancia a los procedimientos y necesidad del paciente por someterse a ellos en beneficio suyo.

  • Finalice su procedimiento suministrando información al paciente sobre lo que debe hacer después en relación con posibles segundos análisis, fecha y hora de entrega de resultados, etc.

  • Selección del sitio de punción

  • Asegúrese que el paciente se ubique en una posición segura y cómoda.

  • Nunca practique una punción sanguínea en un paciente que se encuentre de pie ( La posición de pie es inestable y en caso que el paciente pierda el conocimiento o se desmaye, será mas difícil evitar que se lesione ).

  • No elija una extremidad en donde esté colocada algún tipo de venoclisis.

  • Inspecciones la vena que se va a puncionar ( Preferiblemente que sea visible y fácilmente palpable )

  • Coloque el torniquete con suficiente tensión. No se exceda (Un torniquete muy apretado produce hemólisis, colapso venoso, dolor, etc.)

  • Algunos estudios deben realizarse en muestras extraídas sin torniquete.

  • El torniquete debe permanecer colocado 10 a 15 segundos después de la punción. Retirarlo a tiempo.

  • Si la vena no es muy visible ni palpable, realice un suave masaje en el antebrazo (si es el caso), con movimientos desde la muñeca hacia el codo.

  • Observe siempre las dos extremidades superiores (brazos), para elegir el mejor sitio de punción.

  • Al finalizar el procedimiento, indíquele al paciente que debe conservar la extremidad doblada, de forma tal que se realice presión por lo menos durante cinco (5) minutos. Coloque finalmente una banda adhesiva sobre la herida de la punción.

  • Si el sangrado no se detiene, aplique presión constante sobre la herida durante 10 minutos más. Si el problema aún no se soluciona, comuníquese con sus superior inmediato o directamente con el medico tratante.

  • Deposite y destruya todo el material desechable en los recipientes diseñados para este propósito. Romper las agujas y desechar los elementos utilizados en frente al paciente, aumenta su confianza en el laboratorio.

  • Asegúrese de que los recipientes que contengan las muestras del paciente estén debidamente rotulados, marcados o identificados antes de atender a un nuevo paciente o realizar cualquier tarea.

  • Que hacer si un paciente pierde el conocimiento durante el procedimiento?

  • Retire inmediatamente la aguja del lugar de la punción.

  • Sostenga al apaciente con fuerza para evitar que caiga y se golpee. Solicite ayuda.

  • Coloque sobre la herida de la punción, un apósito, algodón o gasa con sostenida presión, para evitar que siga sangrando.

  • Puede acostarse al paciente en el suelo o en una camilla y deben levantarse sus piernas (Posición de Trendelemburg).

  • Coloque un algodón impregnado con alcohol frente a la nariz del paciente.

  • Una vez que el paciente se encuentre recuperado, proporciónele un vaso con agua.

  • Suminístrele un poco de azúcar (Verificar previamente que esta conducta no este contraindicada para el paciente). Puede rápidamente darle a comer o beber dextrosa que se utiliza en estudios de glucosa.

  • Permita que el paciente tenga buena ventilación. Abra el cuello de su camisa y desajuste la corbata si es el caso.

  • El paciente por si solo sabrá cuando podrá incorporarse.

  • Si las circunstancias lo permiten, haga medición de la presión sanguínea.

  • Punción en un dedo

  • Ciertos exámenes de laboratorio requieren que la extracción de sangre se realice mediante punción en la yema de un dedo.

  • Apretar el pulpejo del dedo seleccionado de manera tal que la extremidad muestre congestión venosa.

  • Desinfectar el sitio de la punción.

  • Tomar una lanceta nueva estéril desechable y realizar una punción rápida y segura.

  • Recolectar las gotas de sangre necesarias evitando presionar demasiado fuerte el pulpejo.

  • Comentario: Debe abandonarse la costumbre de realizar este procedimiento en casos de análisis y determinación de grupo sanguíneo y factor Rh. Las gotas de sangre obtenidas, contienen mezclas de otros líquidos extravasculares que pueden producir interferencias con los resultados. Se recomienda que este tipo de examen sea realizado mediante punción directa de la vena.

    Obtención de muestras de sangre en niños

  • Seguir correctamente las indicaciones propuestas anteriormente.

  • Realizar el procedimiento valiéndose de ayuda de compañeros (as) de trabajo.

  • Sujetar firmemente el brazo del niño, aun cuando el pequeño paciente no oponga resistencia al procedimiento (Usualmente los niños tienden a reaccionar bruscamente al someterlos a procedimientos de extracción de sangre. Esta reacción puede producir una herida mayor en el niño, como el rompimiento de la aguja dentro de la vena.

  • Obtención de muestras de sangre en bebés

    Si la punción de la vena del antebrazo del bebé no es viable, se pueden recolectar muestras de sangre en la punción del talón de uno de los pies. Debe sujetarse firmemente el pie del paciente, aplicar algo de presión en el talón del mismo y esperar a que haya congestión venosa evidente. Realizar la punción con la lanceta estéril desechable y recolectar las gotas de sangre en tubo, en capilar o simplemente colocarlas en una lamina portaobjetos, según sean las necesidades.

    Es recomendable, en la medida que sea posible, que la madre del bebé no presencie el procedimiento.

    Obtención de muestras en lugares inusuales

    En ocasiones, la punción de una vena del antebrazo es muy difícil (Pacientes muy obesos, pacientes que presentan venas fibrosas por tratamiento de quimioterapias, bebes, etc). Se recomienda en primera instancia,, revisar las venas de la mano. (El torniquete en este caso se colocará alrededor de la muñeca). No se recomienda la punción de venas de la mano de bebés (Sus vasos sanguíneos a este nivel son muy delgados y se corre el riesgo de producir extravasación interna de sangre).

    Si el dorso de la mano no muestra adecuadas condiciones para realizar la punción, se puede acudir al dorso del pie. Un excelente lugar para obtener muestras sanguíneas en casos difíciles, es puncionando la vena yugular externa. Esta opción y técnica esta reservada únicamente al profesional que tenga amplia experiencia en este tipo de procedimientos.

  • RECOLECCCION DE MUESTRAS DE ORINA

  • Examen parcial de orina y urocultivo

    Normalmente, se encuentran bacterias en la porción distal de la uretra y el perineo. Estos microorganismos son contaminantes de la orina y deben evitarse mediante técnicas de recolección asépticas.

  • Limpiar la región periuretral ( Extremidad del pene, labios, vulva) por medio de los lavados sucesivos con agua y jabón o un detergente liviano, enjuagando muy bien con agua esterilizada para quitar el detergente, mientras se mantiene retraído el prepucio o los pliegues de la vagina.

  • Limpiar la uretra, dejando pasar la primera parte de la micción la cual se desecha.

  • Recoger directamente en un frasco estéril la orina que se emite a continuación (Orina de segunda parte de la micción ).

  • La orina recolectada se utiliza para cultivo y recuento de colonias.

  • En la mujer, se recomienda recolectar de esta manera (2) muestras sucesivas para alcanzar un 95 % de seguridad si se emplea el recuento bacteriano de 10 5/mL como índice de bacteriuria, aun cuando este no es el procedimiento de rutina en la práctica, a menos que exista duda con respecto al diagnóstico.

    En el hombre, contando con la cooperación del paciente, basta un solo cultivo de orina para establecer la existencia de bacteriuria.

    Como generalmente la orina favorecerá el crecimiento de la mayoría de los gérmenes urinarios patógenos ( Al igual que los medios de cultivo rutinarios ) es absolutamente necesario que el cultivo de orina se realice dentro de la primera hora posterior a su recolección o que se mantenga en refrigeración (4º Centígrados) hasta el momento de su procesamiento. Algunos estudios demuestran que se pueden mantener las muestras de orina en refrigeración durante periodos prolongados, sin que se reduzca considerablemente su contenido bacteriano y los recuentos permanecen estables por lo menos 24 horas a la temperatura del refrigerado (4º. C).

    Si en el laboratorio se reciben durante el día diferentes muestras, se podrán colocar en refrigeración a medida que van llegando, para analizarlas todas en un determinado momento.

    Existen métodos comerciales, con un preservador que elimina la necesidad de refrigeración. Este método, contiene un preservador de ácido borrico, glicerol y formato de sodio.

    Recolección de muestras de orina en niños

    En niños, puede utilizarse una bolsa de plástico estéril colectora de orina (Producto comercial. La bolsa se colocará después de haber lavado los genitales adhiriéndola a la piel por medio de un anillo adhesivo. Si no es posible recolectar orina en los siguientes 45 minutos, deberá cambiarse la bolsa por una nueva. Si no se dispone de bolsa recolectora, podrá acudirse a un guante estéril desechable, cuidando que no contenga talco: adherir el guante desechable con esparadrapo.

    Punción suprapúvica

    Ocasionalmente, la aspiración por punción suprapúbica de la vagina puede ser necesaria y está a cargo del médico su recolección. Comprende la punción directa de la vejiga a través de las pares abdominal con aguja y jeringa estériles. ( Debe asegurarse que el paciente tenga la vejiga llena antes de iniciar el procedimiento )

    Uso de Catéteres ( Sonda de Foley, Nelaton, etc.)

    Puede investigarse la presencia o ausencia de infección, obteniendo la muestra de orina por medio de catéter, limpiando debidamente el sitio en donde se va a puncionar. No se debe tomar nunca el recipiente del mecanismo de recolección.

    Cultivo de punta de catéter urinario

    Se acepta generalmente en la literatura, que la práctica de cultivar la punta de un catéter urinario después de retirarlo es absolutamente inútil, ya que la punta del mismo se contamina al retirarla de la uretra. Se recomienda firmemente no presentar para cultivo puntas de catéteres urinarios, cultivando, en cambio, una muestra de orina.

    Cultivo anaerobio de orina

    La orina evacuada nunca debe cultivarse anaeróbicamente debido a la inevitable presencia de anaeróbicos de la flora normal de la uretra y áreas vecinas. Las infecciones anaeróbicas del tracto urinario son sumamente raras; si existe evidencia clínica o radiológica de infección anaeróbica o si la coloración de Gram sugiere la presencia de anaerobios en la orina, debe obtenerse la muestra por punción suprapúbica.

    Cultivo de cálculos renales y vesicales

    Nemoy y Stamey recomiendan cultivar los cálculos recuperados por aspiración con aguja durante un procedimiento quirúrgico y que el cálculo obtenido se lave cuatro (4) veces con solución salina estéril,, hasta pulverizarlo. Cultiva la muestra por procedimiento cuantitativo, como la orina; posteriormente, se identifican los microorganismos. Los organismos que degradan úrea están firmemente enclavados en el cálculo.

    Investigación de bacilo de Koch (BK) en orina

    La presencia de piuría y hematuria en paciente sin bacteriuria indica la posibilidad de tuberculosis en el sistema urinario.

  • Utilizar frasco estéril de boca ancha y tapa.

  • Recolectar tres (3) muestras seriadas de la primera orina de la mañana (Recolectar la primera parte de la micción hasta llenar el frasco proporcionado).

  • Evitar procesar muestras de 12 y de 24 horas ( Proliferación abundante de otras bacterias sobre las Mycobacterias).

  • Recolección de orina de 12 horas

  • Orinar por la mañana al levantarse y anotar exactamente la hora (Esta muestra no se recolecta).

  • Recolectar las muestras posteriores de orina (Mañana y tarde) en el recipiente proporcionado por el laboratorio, hasta cumplir 12 horas de haber desechado la primera muestra de la mañana.

  • El recipiente debe ser preferiblemente de color opaco. Conservar el frasco en nevera durante el estudio. (Temperatura de 4º. Centígrados).

  • Es importante tener cuidado al vaciar la orina en el frasco para que no se pierda nada de ella. En caso de olvidar recolectar parcial o totalmente alguna muestra, deberá iniciarse nuevamente el estudio.

  • Recolección de orina de 24 horas

  • Orinar por la mañana al levantarse y anotar exactamente la hora ( Esta muestra no se recolecta ).

  • Recolectar las muestras posteriores de orina (Mañana, tarde y noche ) en el recipiente proporcionado por el laboratorio, El recipiente debe ser preferiblemente de color opaco. Conservar el frasco en nevera durante el estudio. (Temperatura de 4º. Centígrados).

  • Al día siguiente, exactamente a la misma hora en que la orina fue desechada el día anterior, se recoge la última muestra.

  • Conservar el frasco en nevera durante el estudio.

  • Es importante tener cuidado al vaciar la orina en el frasco para que no se pierda nada de ella. En caso de olvidar recolectar parcial o totalmente alguna muestra, deberá iniciarse nuevamente el estudio.

  • 3. RECOLECCION DE MUESTRAS PARA ESTUDIOS DE HONGOS

    Escamas

  • Interrogar al paciente sobre uso de talcos o cremas que interfieren con el examen.

  • Abstenerse de tratamiento antimicótico 10 días previos al estudio

  • Limpiar el área de toma de la muestra con gasa humedecida en agua destilada estéril o alcohol. ( No se debe utilizar algodón en la limpieza del área afectada ).

  • Raspar cuidadosamente cuchilla estéril de bisturí los bordes de la lesión. (Tomar muestras de diferentes lesiones)

  • Colocar las escamas desprendidas sobre un portaobjetos de vidrio estéril o dentro de caja Petri estéril.

  • Si existen vesículas, deben romperse con la punta de la cuchilla o de una lanceta estéril y su contenido en los recipientes indicados.

  • Puede colocarse también cinta pegante transparente sobre la lesión y después de haber presionado la lesión con la misma, retirarla y posteriormente pegar la cinta en el portaobjetos.

  • Procurar tomar muestras suficientes para examen directo y cultivos.

  • Procesar las muestras antes de dos (2) horas.

  • Uñas

  • Remover esmaltes de la uña tres (3) días antes del estudio.

  • Abstenerse de tratamiento antimicótico local 15 días previos al estudio. ( En caso de tratamiento sistémico, suspenderlo y realizar el estudio entre dos y seis meses después).

  • Limpiar el área de toma de muestra con gasa humedecida en agua destilada estéril o alcohol. (No utilizar algodón)

  • Raspar con cuchilla estéril de bisturí la zona de la placa ungueal afectada, de extremo distal o proximal.

  • Si la lesión se encuentra en la región distal de la uña, cortar con tijeras o cortauñas estériles la porción afectada.

  • Colocar el material recolectado en una caja Petra estéril.

  • Procurar tomar muestras suficientes para examen directo y cultivos.

  • Procesar las muestras antes de dos (2) horas.

  • Cabellos

  • Elegir con lupa los cabellos afectados ( Opacos, descoloridos, con nódulos, quebradizos, etc.)

  • Cortar con tijeras los cabellos elegidos y depositarlos en caja de Petri estéril.

  • Si se aprecia descamación de cuero cabelludo, recolectar escamas del mismo.

  • Deben recolectarse por lo menos cinco (5) cabellos

  • Procesar la muestra antes de dos (2) horas.

  • Material ocular

  • El material ocular que se desea estudiar ( Muestra de conjuntiva, muestra de córnea, etc. ) debe ser recolectado por el especialista oftalmólogo.

  • No se recomienda utilizar escobillón con punta de algodón para recolección de muestras destinadas a estudio de hongos. ( Al microscopio, se confunden las fibras de algodón con posibles agentes micóticos. )

  • Procesar la muestra antes de dos (2) horas.

  • Material ótico

  • Humedecer un escobillón en agua destilada o solución salina estéril.

  • Introducir la punta del escobillón en el conducto auditivo externo frotando la región afectada.

  • Exprimir delicadamente la punta del escobillón sobre una lámina de vidrio estéril.

  • Procesar las muestras antes de dos (2) horas.

  • Mucosa oral

  • Raspar cuidadosamente las superficies epiteliales afectadas.

  • Utilizar espéculo estéril, cuchilla de bisturí romo o escobillón impregnado en agua destilada o solución salina estéril.

  • Depositar el material obtenido en tubo estéril con tapa que contenga muy pocas gotas de solución salina estéril.

  • Procesar las muestras antes de dos (2) horas.

  • Mucosa nasal

  • Utilizar material estéril ( espéculo, bisturí, asa bacteriológica o escobillón ).

  • En caso de presencia de úlceras, raspar cuidadosamente la lesión.

  • Depositar el material recolectado en recipiente estéril con tapa. ( Caja de Petri, tubo de vidrio, etc. ).

  • Procesar las muestras antes de dos (2) horas.

  • Mucosa vaginal

  • Abstenerse de utilizar antisépticos o medicamentos de aplicación intravaginal tres (3) días previos al estudio.

  • Introducir espéculo metálico estéril o de plástico desechable. No utilizar lubricantes.

  • Tomar con escobillón impregnado en agua destilada o solución salina estéril, la muestra deseada.

  • Colocar el escobillón en recipiente estéril con tapa, que contenga unas pocas gotas de agua destilada o solución salina estéril.

  • Colocar una de las muestras tomadas en tubo de vidrio estéril con tapa, que contenga un (1) mL de hidróxido de Potasio (KOH) al 10 %. 6.Procesar las muestras antes de dos (2) horas.

  • Mucosa genital masculina y mucosa perianal

  • Raspar cuidadosamente el área afectada, con cuchilla estéril de bisturí. Si existen vesículas, se podrán puncionar con lanceta estéril. En caso de secreción, utilizar escobillón impregnado en agua destilada o solución salina estéril.

  • Depositar las muestras en recipiente estéril con tapa.

  • Se recomienda el procesamiento inmediato de las muestras.

  • Expectoración ( Esputo )

    Ver recomendaciones para obtención de expectoración.

    Secreciones bronquiales

    Este tipo de muestras debe ser recolectada mediante tubo endotraqueal conectado a recipiente (trampa) estéril. Procedimiento estrictamente intrahospitalario.

    El material que se obtenga debe ser colocado en recipiente estéril con tapa y debe procesarse inmediatamente. ( Es recomendable realizar extendidos en láminas de vidrio las cuales secarán naturalmente, para proceder posteriormente con métodos de coloración de las mismas. )

    Cepillado bronquial

    Este tipo de procedimiento debe ser realizado estrictamente por el médico especialista, valiéndose de broncoscopia. El material que se obtenga se extiende en láminas de vidrio y será destinado a exámenes de citología y/o coloración especifica. Se puede también colocar parte del material obtenido en recipiente estéril con tapa para fines de cultivo.

    Las muestras deben ser procesadas inmediatamente después de su recolección.

    Lavado broncoalveolar

    Se trata de un procedimiento reservado estrictamente para el médico especialista. Depositar el material obtenido en frasco estéril con tapa. La muestra debe procesarse inmediatamente después de su recolección.

    Liquido cefalorraquídeo

  • Este procedimiento está reservado estrictamente para profesionales de medicina con experiencia en la realización del mismo.

  • Debe realizarse en condiciones completamente asépticas.

  • Se requieren de 5 a 10 mL de líquido cefalorraquídeo, los cuales deberán colocarse en frasco estéril de vidrio con tapa. La muestra debe procesarse inmediatamente.

  • No debe refrigerarse.

  • Sangre

  • Obtener muestra de sangre periférica la cual se coloca en tubo de vidrio estéril que contenga anticoagulante (Heparina).

  • Se realizan extendidos en láminas de vidrio. El resto del espécimen se destina a cultivo.

  • Procesar las muestras antes de dos (2) horas.

  • Orina

  • Previo aseo y desinfección del área genito-urinaria, obtener la primera muestra de orina de la mañana, desechando la primera parte de la micción.

  • Colocar la muestra en recipiente estéril con tapa.

  • En caso que el paciente no pueda recolectar la orina por micción natural, deberá acudirse a la punción suprapúbica de la vejiga, procedimiento reservado al médico especialista.

  • Procesar la muestra antes de dos (2) horas.

  • Liquido pleural, pericárdico, peritoneal, articular o sinovial

  • La recolección de muestras de este origen, está reservada estrictamente al médico especialista.

  • Se recomienda la obtención de muestras en tubos estériles de vidrio con tapa, provistos de anticoagulante ( 1 mL de heparina por 10 mL de espécimen )

  • Se recomienda la recolección de mínimo diez (10) mL de liquido.

  • Procesar la muestra antes de dos (2) horas.

  • Realizar extendidos en laminas de vidrio, con el sedimento obtenido de la centrifugación de la muestra.

  • Realizar tinciones y cultivos.

  • Biopsias

  • El material de biopsia será proporcionado por el médico especialista.

  • La muestra debe conservarse en solución salina estéril y debe ser enviada al laboratorio en recipiente de vidrio estéril con tapa, o caja Petri estéril.

  • Los cortes del espécimen para examen directo, coloraciones y cultivo deben ser realizados con cuidadosa atención valiéndose de materiales estériles y técnicas asépticas.

  • Procesar la muestra antes de dos (2) horas.

  • Medula ósea

  • Este procedimiento está reservado estrictamente al médico especialista.

  • Se recomienda utilizar jeringa heparinizada y estéril.

  • Colocar una gota de la muestra en lámina de vidrio, realizar extendido y colorear de acuerdo al criterio diagnóstico.

  • Destinar material recolectado para fines de cultivo.

  • Procesar las muestras antes de dos (2) horas.

  • Secreciones en general

  • Se obtiene de acuerdo al lugar de donde se produzcan. Generalmente se recolectan por medio de jeringa estéril, escobillón o capilar de vidrio estéril.

  • El material obtenido deberá colocarse en recipiente de vidrio estéril con tapa. El recipiente podrá contener una pequeña cantidad de solución salina estéril.

  • Procesar las muestras antes de dos (2) horas.

  • Abscesos

  • Puncionar el absceso con agujas y jeringa estériles.

  • Si el absceso se ha reventado previamente, recolectar el material purulento valiéndose de especulo o asa bacteriológica estériles.

  • Colocar el material obtenido en recipiente de vidrio estéril con tapa o dejar el material obtenido en la jeringa y colocar tapón de caucho en la aguja para evitar entrada de aire y contaminación a través de la aguja ( En caso de remisión de la muestra ).

  • Lavado gástrico

  • Este procedimiento esta reservado para el profesional médico. El material para estudio se obtiene mediante sonda nasogastrica estéril y debe depositarse en recipiente de vidrio estéril con tapa.

  • Procesar la muestra antes de dos (2) horas.

  • OBTENCION DE EXPECTORACION

  • Hacer gárgaras con agua y escupirlas.

  • Expectorar y depositar la muestra en un recipiente estéril de boca ancha. Si no fuera posible obtener una verdadera expectoración, entonces:

  • Sobre la cama colocar 2 almohadas y recostarse colocando el abdomen sobre ellas con la cabeza colgada.

  • Aspirar el aire suficiente, levantar el tronco lo más que se pueda y regresar bruscamente a la posición anterior.

  • Depositar la expectoración en el recipiente estéril.

  • Se recomienda que la muestra sea la primera de la mañana y en ayunas para evitar partículas de alimentos.

  • PRUEBA DE TUBERCULINA (PPD)

  • Desinfectar la zona del antebrazo en donde se hará la inyección de PPD. Debe tenerse cuidado de seleccionar un área que no esté provista de vasos sanguíneos visibles, para evitar puncionar los vasos sanguíneos.

  • Inyectar 0.1 mL de PPD por vía intradérmica, con jeringa y aguja estériles desechables ( Se recomienda utilizar jeringa de 1.0 mL ).

  • Se formará un botón intradérmico.

  • Marcar un círculo alrededor de la punción con tinta indeleble.

  • Realizar las lecturas de la reacción a las 24 , 48, 72 y 96 horas posteriores a la punción.

  • 6. CITOLOGIA VAGINAL

    Interrogar a la paciente sobre:

    a. Edad.
    b. Gestiones, partos, abortos.
    c. Fecha última menstruación
    d. Métodos de anticoncepción.
    e. Ultimo control de citología vaginal realizado.

  • Indicar a la paciente que el día del examen, no debe hacerse baño de “ducha vaginal”.

  • La paciente no debe estar menstruando. Esperar tres (3) días después de finalizada la menstruación para realizar el estudio.

  • El día del examen, no deben aplicarse antisépticos ni medicamentos intravaginales.

  • Explicarle a la paciente el procedimiento que se le practicará.

  • Indicarle a la paciente que flexione las piernas sobre el pecho (posición ginecológica). Separar labios menores de la vagina, solicitándole a la paciente que realice maniobra de Monsalva (pujar).

  • Introducir espéculo metálico o de plástico desechable estéril. Localizar visualmente el cuello uterino. Asegurar el espéculo.

  • Observar si existe la presencia de sangrado, masas, úlceras u otras lesiones. Consignar la información.

  • Con bajalenguas de madera estéril, raspar suavemente el endocervix. Colocar la muestra en portaobjetos de vidrio.

  • Con otro baja lenguas de madera estéril, raspar suavemente el endocervix. Colocar la muestra en portaobjetos de vidrio.

  • Fijar las laminillas con fijador apropiado (Laca para cabello, productos comerciales, etc.).

  • Extraer suavemente el espéculo.

  • Debe colaborarse permanentemente con la paciente.

  • Prueba de moco cervical (Cristalización del moco, prueba del “helecho”, arborización del moco)

  • Indicar a la paciente que el día del examen no debe hacerse baño de “ducha vaginal”.

  • Explicar a la paciente el procedimiento que se le practicará.

  • Introducir especulo vaginal metálico o de plástico desechable. Asegurándolo correctamente.

  • No utilizar lubricantes que facilitan la introducción del especulo.

  • Introducir aplicador de algodón estéril y rotarlo sobre el cuello del útero, tomando la mayor cantidad de muestra de moco cervical posible, ( Si durante el procedimiento de obtención del moco se produce algún tipo de sangrado de cervix, no debe permitirse que el moco cervical se mezcle con la sangre ya que este producirá fenómeno de arborización como resultado falso positivo) .

  • Extender la muestra de moco cervical sobre lámina portaobjetos de vidrio. Es muy importante que las láminas portaobjetos de vidrio sean nuevas o hayan sido lavadas con agua destilada ( La solución salina o las sales contenidas en el agua del grifo o tubería de acueducto, producen resultados falsos positivos).

  • Dejar secar la muestra a temperatura ambiente. No se utilizan tinciones.

  • Inmediatamente después de haber secado completamente el extendido de la lámina, observar al microscopio con objetivo de bajo aumento si existe fenómeno de arborización.

  • 7. MATERIA FECAL (COPROLOGICOS, COPROSCOPICOS, COPROCULTIVOS, INVESTIGACION DE PARASITOS, ETC. )

  • Recolectar la muestra en recipiente estéril de boca ancha y con tapa.

  • En bebés, valerse de escobillón de algodón estéril para estimular reflejo de defecación al introducirlo cuidadosamente a través del orificio anal. Colocar la boca del recipiente cerca del ano para recolectar la muestra. (El escobillón puede servir para siembra en medios de cultivo y otros estudios, siempre y cuando recoja considerable cantidad de muestra a través del ano.).

  • Procesar la muestra antes de dos (2) horas. Si esto no es posible, mantener las muestras en refrigeración o temperatura de 4º Centígrados.

  • Se pueden realizar tinciones de láminas, investigación de amebas y otros parásitos, coprocultivos, coprológicos, coproscópicos, estudios de investigación de grasas, procedimientos inmunológicos, etc.

  • Prueba de la cinta pegante o adhesiva (Prueba de Graham)

  • Procedimiento recomendado en la investigación de oxiuros (Enterrobius).

  • Colocar cinta adhesiva en la región perianal del paciente (Método de especial utilidad en niños),

  • Dado que la hembra del parásito deposita los huevos en las horas de la noche y en la región perianal, aplicar la cinta adhesiva antes de acostarse y retirarla por la mañana, antes de que el paciente se levante de la cama.

  • Presionar la superficie adherente de la cinta sobre una lámina portaobjetos de vidrio. Continuar con el procedimiento de observación al microscopio.

  • Sangre oculta en materia fecal

  • El paciente debe abstenerse de ingerir carnes rojas, chorizos, morcillas (rellenas),etc., durante por lo menos tres (3) días antes del examen.

  • La muestra de materia fecal recolectada no debe haberse expuesto a contaminación con orina.

  • Las muestras seriadas durante algunos días, aumentan la exactitud del examen.

  • Generalmente se obtienen resultados falsos positivos en pacientes con hemorroides.

  • 8. URETRA MASCULINA

  • Indicar al paciente que debe abstenerse de orinar al levantarse y que podrá hacerlo una vez que se practique la toma de muestra uretral.

  • Retractar el prepucio del paciente (si es necesario) y limpiar con gasa seca y estéril el meato urinario.

  • Introducir escobillón o asa bacteriológica de punta estériles, muy cuidadosamente, a través del orificio uretral (Aproximadamente 1 a 2 centímetros).

  • Realizar procedimientos de extendidos en láminas portaobjetos, siembra en medios de cultivo adecuadamente seleccionados, investigación inmunológica de otros gérmenes (Chamydia, Ureolasma, etc.).

  • Colocar un escobillón en tubo de vidrio estéril con tapa, que contenga 1 mL de solución salina estéril.

  • LIQUIDO PROSTATICO

  • Indicar al paciente que deberá abstenerse de orinar al levantarse y que podrá hacerlo en el momento previo al estudio, en el Laboratorio.

  • El paciente deberá recolectar una muestra de orina (primera parte de la micción), en frasco de vidrio de boca ancha y con tapa. ( El frasco transparente de vidrio permite observar mejor características físicas de la muestra, tales como filamentos, sangre, moco, etc. ). En esta muestra investigar Trichomona vaginalis.

  • Una vez que el paciente ha recolectado la muestra de orina (la cual arrastró gérmenes indeseables para el estudio prostático presentes en el canal uretral), indicarle al paciente colocarse en posición de pie, piernas abiertas, el tronco flexionado hacia adelante y los codos apoyados en una camilla.

  • Colocarse guante desechable y estéril. Introducir el dedo índice o el dedo medio por el canal rectal y localizar al tacto la próstata. Este procedimiento debe realizarse cuidadosamente y suavemente.

  • Realizar el masaje prostático, frotando la próstata con presión uniforme desde la periferia hasta el centro de la misma (Este procedimiento requiere de experiencia y conocimiento ).

  • Recolectar la secreción prostática que aparecerá a través de la uretra, en frasco estéril con tapa.

  • Nota: Si el médico solicita examen de sangre de antígeno específico de próstata (AEP) (PSA), no debe realizar antes de quince (15) días posteriores a un masaje prostático. (El masaje prostático aumenta normalmente los niveles de antígeno específico de próstata). Comentarios: Existen diferencias entre médicos especialistas en cuanto a la práctica del masaje prostático. Algunos de ellos prefieren que no se realice y que el examen de líquido prostático se efectúe en una muestra semen recolectada por masturbación (el líquido seminal contiene líquido prostático ) El médico deberá especificar el método por medio del cual se desea que se recolecte material prostático ( Masaje prostático o masturbación ).

  • LESIONES Y ULCERAS EN GENITALES
    (Chancro blando, Chancro sifilítico, etc.)

  • Utilizar guantes estériles y desechables.

  • Limpiar con gasa y solución salina estéril, el área de la lesión. No se deben utilizar jabones ni antisépticos debido a su acción bactericida sobre espiroquetas.

  • Secar con gasa seca el área de la lesión. Raspar suavemente el interior de la lesión, procurando que sangre ligeramente.

  • Con otra gasa se remueven las primeras gotas de sangre/suero y se repite la limpieza hasta que solamente se aprecie un exudado claro sin sangre.

  • Obtener el exudado de la parte interna y más profunda de la lesión con un tubo capilar, asa bacteriológica o punta de cubreobjetos estériles.

  • Colocar el material obtenido entre lámina portaobjetos y laminilla cubreobjetos estériles (Preparación en fresco para la observación con microscopio de campo oscuro).

  • Este procedimiento se recomienda igualmente en situaciones de presuntas lesiones sifilíticas en membranas mucosas (boca, ano, etc.)

  • 11. TOMA DE MUESTRAS BACTERIOLOGICAS

    Mediante el estudio bacteriológico se puede llegar a establecer un diagnóstico etiológico en un determinado proceso infeccioso de origen bacteriano.

    Cuando el laboratorio clínico recibe y/o toma muestras bacteriológicas para analizar, puede en general realizar examen directo, cultivos y antibiogramas. Adicionalmente, puede también realizar estudios mas sofisticados, los cuales día a día están desplazando cada vez más a los estudios tradicionales como en casos de utilización de técnicas inmunológicas, serológicas y técnicas moleculares.

    Deben tenerse en cuenta causas que puedan generar incongruencia en los resultados (Resultados falsos positivos o falsos negativos) entre otras:

    Muestras inadecuadas:

    Contaminación en el proceso de toma de muestra, insuficientes conocimientos del procedimiento a realizar, muestras escasas o pobres, fallas en la preparación del paciente, inadecuada ilustración del procedimiento al paciente, toma de muestra en sitios ajenos al problema, desconocimiento de información de interés para la orientación del diagnostico, paciente bajo antibioticoterapia, transporte inadecuado de la muestra, demoras en el proceso de especímenes o simplemente, lo que es desafortunadamente muy usual, deficiente comunicación entre el medico y el laboratorio, lo cual redunda en un problema adicional para el paciente.

    Tracto respiratorio alto superior

    Los exámenes microbiológicos del tracto respiratorio alto deben interpretarse cautelosamente, debido a la presencia de microflora normal, tanto en cavidad oral como en nariz y faringe; además por la frecuente adquisición nosocomial de microorganismos potencialmente patógenos.

    Las muestras obtenida de las lesiones de la boca, faringe y nariz, deben procesarse de acuerdo con una metodología que es prácticamente general, salvo contadas excepciones. Con esto se busca identificar y diferenciar la microflora normal y la microflora patógena.

    Para estos procesos el laboratorio clínico debe disponer, entre otros, de los siguientes elementos y materiales, debidamente esterilizados: escobillones aplicadores, bajalenguas, laminas portaobjetos, laminillas cubreobjetos, tubos de vidrio, medios adecuados de transporte, Cajas de Petri, apropiados medios de cultivo apropiados de enriquecimiento y diferenciales, incubadora, etc.

    Notas: En los estudios de Laboratorio, cualquiera que sea el caso, siempre se deberá interrogar al paciente, si esta recibiendo algún tipo de medicación (Antibióticos, antihistamínicos, etc.). Esta información debe consignarse y tenerse en cuenta, en caso de incongruencia en los resultados finales de los estudios de laboratorio por interferencia con medicamento.

    Todas las muestras recolectadas para estudios de laboratorio, deben llegar al laboratorio en donde serán procesadas, en el menor tiempo posible. Mientras se remiten y se transportan, deberán mantenerse en refrigeración (4º Centígrados).

    Cavidad oral y faringe

  • El paciente debe abstenerse de cepillarse los dientes (Algunos dentífricos y antisépticos orales son bactericidas).

  • Visualizar correctamente el área de toma de muestra. (Utilizar linterna, lámpara, etc.)

  • Pasar varias veces y vigorosamente los escobillones por las paredes orales, encías, carrillos, paladar, lengua, úvula, amígdalas y faringe posteriormente (Utilizar bajalenguas de madera para permitir una buena visualización de la faringe), especialmente sobre áreas en donde existan ulceraciones, cavitaciones, vesículas, exudados, “placas” e inflamación.

  • Disponer de la muestra tomada con los escobillones, para examen directo (Examen en fresco, frotis y extendidos en laminas portaobjetos para coloración de Gram, Stoltenberg, etc.).

  • Tomar con un nuevo escobillón, muestra para siembras en los diferentes medios de cultivo y guardando alguno de los escobillones en un tubo de vidrio con tapa que contenga solución salina estéril. ( En este tipo de solución se reproduce muy bien las candida sp. ).

  • Se recomienda identificar y clasificar Streptococcus pyogenes del grupo A, mediante pruebas inmunológicas (Látex, Elisa, etc.), Esta lactobacteria es causante de la mayoría de laringitis bacterianas.

  • Cavidad nasal

    1. Debe recolectarse siempre material de ambas fosas nasales, por separado, a menos que el médico desee estudiar específicamente una sola fosa nasal. El médico debe especificar en la orden médica su deseo.

    2. Seguir las recomendaciones que para cavidad y faringe se proponen, incluyendo la identificación de Streptococcus pyogenes del grupo A, metodologías inmunológicas.

    Oído

  • Si se trata de secreción (Otorrea), recolectar con escobillones estériles la muestra. Si existe perforación de la membrana timpánica, el medico especializado utilizara catéter para su recolección (Este ultimo procedimiento está reservado exclusivamente al médico especialista en otorrinolaringología).

  • En todos los casos, procurar obtener la mayor cantidad posible de material biológico. Seguir las mismas recomendaciones proporcionadas para muestras oronasofaringeas.

  • En caso de investigación de hongos (Otomicosis), remitirse a las indicaciones de toma para este tipo de estudios (Escamas, costras, etc.).

  • Senos paranasales y laringe

  • Estos procedimientos, debido a los cuidados y dificultades técnicas de su recolección, están reservado exclusivamente al medico especialista.

  • El proceso en el laboratorio, una vez recibidas las muestras, es similar a los estudios anteriormente señalados.

  • Prestar especial atención cuando se trate de investigación de gérmenes anaerobios.

  • Otros estudios

    Sobre el diagnóstico de los virus con viene hacer algunas precisiones sobre la utilidad de las metodologías, especialmente por la gran cantidad de virus responsables de algunas enfermedades otorrinolaringológicas (Boca, cavidad oral, faringe, nariz y oído).

    En ocasiones algunos médicos se ha acostumbrado a diagnosticar enfermedades virales basadas en información inespecífica de resultados del laboratorio que es ( Leucopenia, ausencia de leucocitos en el examen directo, cultivos bacterianos negativos, etc.) debido a que hasta el momento, los procedimientos para identificar agentes virales, los realizan secciones de virología de algunas instituciones que utilizan rutinariamente metodologías especializadas (Cultivos celulares, pruebas de neutralización, inhibición de hemoabsorción y hemoaglutinación, fijación de complemento, etc.).

    No obstante, en muchos laboratorios clínicos se cuenta con técnicas de inmunofluorescencia, que permiten la detección de anticuerpos séricos específicos de algunos virus (p.ej. Herpes 1 y 2) o pruebas de aglutinación y hemoabsorción (p.ej. Anticuerpos heterófilos, virus Epstein-Barr, etc.).

    Para hacer un acertado diagnóstico microbiológico, es fundamental conocer, primero que todo, la variedad, ubicación y función de los distintos gérmenes que integran la flora microbiana (Microflora normal y microflora patógena), en las diferentes estructuras anatómicas, aspecto primordial en la adecuada selección del material biológico (Muestra que se va a examinar, así como en la interpretación de los resultados.

    Se debe mantener especial cuidado en los procesos de toma y recolección de muestras (procesos que requieren de maniobras asépticas) puesto que el aislamiento e identificación de los microorganismos pertenecientes a la microflora normal, “contaminante de la muestra”, hacen dispendioso el trabajo del laboratorio y crea dificultades al médico para una racional interpretación de los resultados y posterior descripción del tratamiento. Es importante recordar que pueden observarse diferentes microfloras normales entre una persona y otra; esto depende de numerosos factores tales como por ejemplo, particularidades hormonales y metabólicas, hábitos alimenticios, de vivienda, de higiene, etc.

    Ojo

    Los procesos infecciosos en ojos incluyen en la mayoría de los casos, conjuntivitis, blefaritis, úlcera de córnea y orzuelos. Se observa en general escaso número de bacterias patógenas en los exámenes directos después de su coloración. En los cultivos, también son escasos los crecimientos abundantes de microorganismos, debido a la acción antibacteriana de las lágrimas y al arrastre que éstas producen constantemente.

  • No utilizar agentes locales a la toma de la muestra. Si ya han sido aplicados, el paciente deberá suspenderlos durante 24 horas y asistir al laboratorio para la toma de muestras.

  • Utilizar escobillones estériles (Si la muestra es escasa, utilizar asa bacteriológica estéril ).

  • En muchos casos (p.ej. úlceras de córnea) el oftalmólogo se reservará el derecho a tomar la muestra, valiéndose de procedimientos como raspado de la córnea mediante bisturí estéril).

  • Colocar la muestra en tubo de vidrio estéril con tapa que contenga solución salina estéril.

  • Realizar extendidos en portaobjetos de vidrio, que serán coloreados posteriormente.

  • Realizar siembras inmediatamente en los medios de cultivo seleccionados.

  • En caso de remisión de muestras, valerse de los medios de transporte adecuados.

  • Procesar las muestras antes de dos (2) horas.

  • En caso de investigación de hongos, remitirse a las indicaciones propuestas.

  • Líquido cefalorraquídeo

  • Procedimiento reservado exclusivamente para el profesional de medicina con experiencia suficiente en el mismo.

  • Debe recolectarse en condiciones de total asepsia.

  • Se requieren de 5 a 10 mL de líquido cefalorraquídeo, los cuales deberán colocarse en tubo de vidrio estéril con tapa.

  • No se debe refrigerar.

  • Procesar la muestra inmediatamente.

  • Sangre (Hemocultivos)

  • Interrogar al paciente si se encuentra bajo tratamiento con antibióticos. Consignar esta información.

  • Seleccionar la zona que será puncionada para la extracción de sangre (Vena palpable).

  • Desinfectar alrededor la zona seleccionada.

  • Lavar cuidadosamente la región, con agua y jabón (remover el desinfectante).

  • Aplicar con gasa o algodón, una solución de yodo sobre el área seleccionada en forma concéntrica del centro hacia la periferia, y desechar el algodón o gasa utilizados.

  • Permitir la acción del yodo durante tres (3) a cinco (5) minutos.

  • Remover completamente la solución de yodo con gasa o algodón estériles impregnados en alcohol de 70º. Realizar el procedimiento en forma concéntrica descartando siempre la torunda o gasa una vez se llega a la periferia de la zona de punción. Repetir este procedimiento cinco (5) veces.

  • No se debe tocar la piel con la mano una vez que el área ha sido desinfectada. Antes de hacer la punción venosa con aguja y jeringa de 20 mL estériles, palpar la vena utilizando guantes desechables y estériles, para proceder con seguridad.

  • En caso de utilizar recipientes comerciales de hemocultivos, seguir cuidadosamente las instrucciones de utilización del equipo de venoclisis que usualmente se incluye.

  • Una vez concluida la toma , debe reemplazarse la aguja con la cual se hizo la punción, por una aguja nueva estéril desechable con la cual se inyectará la muestra de sangre obtenida en los recipientes. Colocar las cantidades necesarias de sangre en los recipientes de hemocultivo, previa limpieza y desinfección de la zona de punción en la tapa de los mismos.

  • Mezclar suavemente los recipientes de hemocultivo. No agitarlos bruscamente y procurar que la sangre se impregne en todas las superficies de los medios de cultivo de los frascos.

  • Proceder con actividades propias del estudio (Rotulación, incubación, revisión diaria de cultivos, resiembras, interpretación de resultados, etc.).

  • Muestras vaginales

  • Interrogar a la paciente sobre:

  • Medicamentos que esté tomando.

  • Óvulos o antisépticos vaginales que se esté aplicando.

  • Utilización de dispositivo intrauterino.

  • Edad.

  • Fecha de la última menstruación.

  • Indicar a la paciente que el día del examen, no debe hacerse baño de “ducha vaginal”.

  • Explicar a la paciente el procedimiento que se le practicará.

  • Introducir espéculo vaginal metálico o de plástico desechable. Asegurarlo correctamente. Si la paciente es una niña, no utilizar espéculo vaginal. Advertir a la persona responsable de la niña sobre el procedimiento que se realizará. Si la paciente es mayor y niega haber tenido relaciones sexuales, evitar utilizar igualmente espéculo vaginal.

  • No utilizar lubricantes que faciliten la introducción del espéculo (Los lubricantes producen interferencia en los resultados.).

  • Medir pH vaginal. Anotar el resultado.

  • Tomar muestra de exocervix y fondo de saco posterior con aplicador estéril. Hacer frotis y extendidos para la coloración de Gram.

  • Tomar con un nuevo aplicador, muestras de exovervix y fondo de saco posterior. Colocar el aplicador en tubo de vidrio estéril con tapa, que contenga un (1) mL de solución salina estéril al 0.85 %. ( Muy útil para investigar Trichomonas).

  • Tomar con un nuevo aplicador estéril, muestra de endocervix. Hacer frotis y extendidos para coloración de Gram.

  • Tomar con un nuevo aplicador estéril, muestras de endocervix. Sembrar en medios de cultivo apropiados.

  • En caso de estudio para hongos, remitirse a las recomendaciones dadas en este capítulo.

  • Procesar las muestras antes de dos (2) horas. Todo el material que se utilice para la recolectar las muestras, debe marcarse y rotularse correctamente, indicando el lugar de procedencia de la muestra (Exocervix, endocervix, fondo de saco posterior, etc.)