Introducción:

PRUEBAS DE ACTIVIDAD CARIOGÉNICA:

Recuento de colonias de lacto bacilos:

Introducida por Hadley por primera vez en 1933, calcula el número de bacterias ácido génicas y acidúricas que se encuentran en la saliva, al contar el número de colonias que aparecen en las placas de agar de peptona de tomate (pH 5.0) después de una inoculación con una muestra de saliva. El agar LBS (rogosa), es mucho más selectivo; es ácido y tiene alto contenido de acetato y otras sales, así como una tensión superficial baja. Sin embargo, la especificidad del agar de LBS no es completa, ya que otros organismos fuera de los lacto bacilos pueden crecer ahí. El número total de colonias que se encuentren en este medio refleja la proporción de la flora acidúrica en la saliva.

Prueba de Snyder:

Prueba la rapidez de la formación de ácido cuando una muestra de saliva estimulada se inocula en agar glucosa ajustado a un pH de 4.7 a 5 y con el uso del verde de bromocresol como colorante indicador. En forma indirecta esta prueba también es una medida de las bacterias ácido génicas y acidúricas.

Prueba de la reductasa:

Mide la velocidad a la cual un indicador molecular, diazorresornicol cambia de azul a rojo a incoloro o a una solución blanquecina al someterse a una reducción por la flora salival mixta. Rapp manifestó que “la prueba... mide la actividad de una sola enzima, la reductasa. Esta enzima interviene en algunas reacciones muy especificas y limitantes en la formación de productos peligrosos para la superficie de los dientes.

Prueba de actividad amortiguadora:

Se puede cuantificar mediante el uso, ya sea de un medidor del pH o de colorantes indicadores. La prueba mide la cantidad de mililitros de ácido requerida para bajar el pH de la saliva a través de un periodo arbitrario del pH, como por ejemplo, de un pH de 7.0 a otro de 6.0, así como la cantidad de ácido o base necesaria para llevar a los colorantes indicadores a su punto de equilibrio.

Prueba de Fosdick de la disolución del calcio.

Mide el número de miligramos de esmalte pulverizado que se disuelven en cuatro horas al entrar en contacto con el ácido que se forma cuando la saliva del paciente se mezcla con glucosa y esmalte pulverizado.

Prueba de Dewar:

Es parecida a la de disolución de calcio de Fosdick con la excepción de que se mide el pH final después de las cuatro horas, en vez de la cantidad de calcio que se disolvió.

Pronóstico de la actividad futura de la caries basado en la caries anterior.

La experiencia basada en la caries anterior puede servir como indicador razonable para el pronóstico de la actividad futura de la caries, como un método alternativo de las pruebas químicas o bacteriológicas que se utilizan con este fin. Sin embargo, es recomendable no incluir las superficies oclusales en estas experiencias.

Objetivos:

• Conocer las diferentes pruebas de actividad cariogénica.

• Que practique estas pruebas.

• Que sepa interpretar el resultado de las pruebas de actividad cariogénica.

Material:

Prueba de Bayona:

2 tubos de ensaye estériles.

1 gradilla

2 pipetas de 1 y 2 ml respectivamente.

1 matraz Erlenmeyer con solución glucosada al 1%

1 estufa bacteriológica

4 tiras reactivas para glucosa (glucocinta Lilly)

Prueba de Snyder:

1 tubo de ensaye estéril.

1 tubo de ensaye con medio de Snyder.

1 pipeta de 1 ml.

1 baño María.

1 mechero

1 tripié.

1 estufa bacteriológica.

Cuenta de lacto bacilos:

1 tubo de ensaye estéril.

1 tubo con 9.9 ml de solución salina estéril

1 tubo con 9 ml de solución salina estéril.

1 tubo con medio de rogosa.

1 gradilla.

2 pipetas de 1ml estériles.

1 caja de Petri estéril.

1 baño María.

1 tripié.

1 mechero.

1 estufa bacteriológica.

Método:

Prueba de Bayona:

• Se toma muestra de saliva en un tubo de ensaye estéril.

• Se miden 1.8 ml de saliva con una pipeta y se coloca en otro tubo de ensaye.

• Se agrega solución glucosada al 1%

• Se agita y toma tiempo.

• Se lleva a la estufa bacteriológica a 37°

• Después de 30 minutos se sumerge la tira reactiva dejándola medio minuto.

• Se hace la lectura.

Prueba de Snyder:

• Se recolecta saliva (aprox. 2 ml)

• Se diluye el medio de Snyder en baño María.

• Se agrega .2 ml de saliva y se agita.

Cuenta de lacto bacilos:

• Recolectar 2 ml de saliva.

• Un ml se agrega al tubo con 9 ml de solución salina y se mezcla.

• De esta mezcla se extrae .1 ml y se agrega al tubo con 9.9 ml de solución salina y se mezcla.

• De este mezcla se toma 1 ml y se lleva al tubo con rogosa ya diluida y se mezcla.

• Se vacía a la caja de Petri.

Resultados:

Prueba rápida de Bayona: Negativa.

Prueba de Snayder:

24 horas: Comenzó a disminuir el volumen del medio de Snyder, aparece líquido en la parte de arriba del medio.

48 Horas: Aparecen pequeños puntos blancos a lo largo de todo el tubo de ensaye.

72 horas: Cambia el color del medio a casi completamente amarillo.

(Se observaron cambios los siguientes dos días como el total cambio de color o la pérdida de las pequeñas partículas verdes que había a lo largo del tubo).

Cuenta de lacto bacilos: No hubo crecimiento.

Análisis de resultados:

En la prueba de Bayona fue negativa por lo que se concluye que no es susceptible a la caries.

La prueba de Snyder se observo todo el proceso de cambio físicos que presentó.

La cuenta de lacto bacilos salió negativa, lo que hace pensar en algún error en el procedimiento.

Conclusiones:

Las pruebas de cario génesis sirven al odontólogo para saber el tratamiento que se le dará al paciente después de llevarlo a un estado homeostático.

También para saber que tipo de recuperación sería la más adecuada para el paciente.

Bibliografía:

Newborn, Ernest.

Cariología.

Ed. Limusa

México, 1984

396 pp.