ELEMENTOS DE LABORATORIO DE ANALISIS CLINICOS

TUBOS

Sirven para hacer ensayos químicos en el laboratorio. Hay de diferentes tipos: Khan, hemólisis, ensayo corto, ensayo largo, cónicos y de micro centrífuga.

Khan: sirve para realizar diluciones, ensayos químicos con volúmenes muy pequeños y para separar alícuotas de suero o plasma.

Hemólisis: sirve para la recolección de muestras sanguíneas y para realizar ensayos químicos.

Ensayo corto: sirve para la recolección de muestras sanguíneas y para realizar ensayos químicos.

Ensayo largo: sirve para tomar muestras bacteriológicas y para realizar ensayos químicos.

Cónicos: sirven para obtener la mayor cantidad de sedimento de una muestra.

De micro centrífugo: tienen una tapa unida al cuerpo de tubo para que pueda ser llevado a la micro centrífuga. Esta preparado para soportar la fuerza centrifuga.

PIPETAS

Son materiales volumétricos que están formados por un tubo transparente graduado y una punta cónica. Sirven para medir volúmenes con gran presicion. Sus capacidades son 0,1 - 0,2 - 1 - 2 - 5 - 10 - 20 - 25 ml.

Hay de dos tipos: de simple enrase (se enrasa en la marca que corresponda y se deja vaciar por completo) y de doble enrase (se debe enrasar al llegar a la ultima marca).

Enrasar: es llevar el líquido a volúmenes haciendo coincidir el menisco con el aforo.

La pipeta se enrasa de la siguiente forma:

Colocar la pipeta en el recipiente y en su extremo colocar una perita de goma para que el liquido comience a ascender. Sacar la perita y tapar el extremo con el dedo índice ejerciendo presión. Luego disminuir la presión ejercida para que el líquido descienda. Volver a ejercer presión cuando el menisco del líquido llegue a la marca correspondiente. Trasladar la pipeta al recipiente y volver a disminuir la presión del dedo y dejar drenar el líquido lentamente. No forzar la caída de las últimas gotas.

MICROSCOPIO

Es un instrumento óptico que mediante la combinación de sus lentes se puede observar de tamaño muy aumentado elementos muy diminutos.

m) objetivos

MANEJO DEL MICROSCOPIO

MANEJO DEL OBJETIVO DE INMERSION

EXTRACCIÓN DE MUESTRAS SANGUINEAS

El sitio mas habitual para la extracción de sangre venosa es el hueco del codo. Ay que tener en cuenta lo siguiente cundo se trasvasa la sangre de la jeringa: introducir la sangre por las paredes del tubo. Nunca debe caer en el aire. Evitar la formación de espuma, no introducir la sangre a través de la aguja ya que la sangre puede hemolizarse. Cuando se mezcla con los anticoagulantes se debe hacer por inversión suave y nunca hay que agitar para mezclar

Los materiales necesarios para la extracción son: lazo, agujas, jeringas, descartador de agujas, algodón y alcohol.

TECNICA DE PUNCION VENOSA

• se introduce la aguja con suavidad y rapidez

• tirar del embolo con tensión lenta y uniforme dejando la aguja firme en su lugar

• cuando la sangre comience a fluir liberar el lazo y pedir al paciente que relaje el puño

• se coloca un algodón en la zona de punción y retirar la aguja. Ejercer presión sin dar masaje

8) se llena el tubo y se mezcla la sangre con los anticoagulantes

RECIPIENTES DE RECOLECCION

Para la obtención de:

• plasma: con anticoagulante. se homogeniza y luego se centrifuga. Se obtienen 2 fases: arriba el plasma y abajo las células.

• Sangre entera: con anticoagulante. Se homogeniza. Se obtiene 1 fase que la sangre entera.

• Suero: en tubo seco sin anticoagulante. Luego de la coagulación completa se centrifuga. Se obtienen 2 fases: arriba el suero y abajo el coagulo.

Hematología: EDTA 2%

Coagulación: citrato de Na 3,8%

Eritrosedimentacion: citrato de Na 3,8%

Química clínica: ningún anticoagulante

Virológica: ningún anticoagulante

HEMATOLOGÍA

Los componentes de la sangre son los líquidos (plasma) y celulares (eritrocitos, leucocitos y trombocitos).

FROTIS DE LA SANGRE

Es una extensión delgada de sangre sobre un portaobjetos. Se usa para la observación microscópica de las células sanguíneas. Se debe realizar con sangre fresca (sin anticoagulante) obtenida por punción cutánea (lóbulo de la oreja o del dedo) o de la jeringa (muestra alternativa), ya que los anticoagulantes pueden alterar la morfología de los elementos y la coloración de la tinción.

CONFECCIÓN DEL EXTENDIDO

TENER EN CUENTA

• el extendido solo debe ocupar ¾ partes del porta.

• El frotis debe tener 3 zonas bien definidas: la cabeza (zona inicial gruesa), el cuerpo (zona mediana) y la cola (zona delgada).

• La distribución y separación de los hematíes debe ser buena hacia la zona de la cola.

• Los leucocitos no deben estar próximos entre si.

• Los datos del paciente se anotan en el extremo grueso del porta (extremo derecho)

COLORACIÓN DEL FROTIS SANGUÍNEO

Coloración de may-g - giemsa:

Método de giemsa:

PROBLEMAS DE TINCIÓN

Extensiones excesivamente azuladas: se debe a un lavado inadecuado, tinción muy gruesa, concentración mayor de giemsa, tiempo prolongado de tinción.

Extensiones excesivamente rosadas: se debe a tinción insuficiente, concentración menor de giemsa, acidez del colorante.

FÓRMULA LEUCOCITARIA

Expresa la cantidad y proporción de los diferentes tipos de leucocitos en la sangre.

LEUCOCITOS

Se dividen en granulositos y agranulocitos.

GRANULOSITOS

Neutrofilo cayado: tiene núcleo violeta con forma de U o C y el citoplasma rosa.

Neutrofilo segmentado: tiene núcleo violeta lobulado. Puede tener de 2 a 7 lóbulos unidos por un hilo de cromatina. El citoplasma es rosa.

Eosinofilo: tiene núcleo bilobulado de color violeta. El citoplasma es incoloro y tiene gránulos naranjas en el citoplasma que no se superponen al núcleo.

Basofilo: tiene por lo general el núcleo bilobulado y muchos gránulos grandes de color azul que cubren por completo al núcleo y citoplasma.

AGRANULOCITOS

Linfocitos: tienen núcleo de color violeta indentado y citoplasma celeste.

Monolito: tiene núcleo de color lila y de forma arriñonada (forma de riñón) y el citoplasma es gris.

OBSERVACIÓN MICROSCÓPICA DEL EXTENDIDO

Primero se debe aplicar una gota de aceite de inmersión en el extendido y desplazarla a lo largo del porta con una varilla de vidrio o con el dedo.

Primero observar con el objetivo de 10x para obtener una vista panorámica. Luego pasar al de 40x.

El de 100x solo es adecuado para el reconocimiento de las células.

RECUENTO DIFERENCIAL LEUCOCITARIO

Primero se explora el área de recuento y este se realiza por medio de la técnica de festoneado, donde se desplaza de arriba hacia abajo y de lado a lado para no pasar dos veces por la misma zona. A medida que se van contado los leucocitos se clasifican hasta haber contado 100 elementos. Se puede hacer un registro de los elementos contados escribiendo una señal en un papel por cada leucocito contado. El orden de clasificación es el siguiente: NC/NS/E/B/L/M